Малоинвазивная диагностика рака легкого на основе анализа внеклеточной микроРНК крови

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Одной из причин высокой смертности больных раком легкого (РЛ) является нехватка высокочувствительных диагностических маркеров этого заболевания. в качестве таковых могут быть предложены маркеры генетических и эпигенетических процессов, характерных для опухолевых клеток, например микроРНК. известно, что внеклеточная/циркулирующая  микроРНК биологических жидкостей в комплексах с белками или упакованная во внеклеточные везикулы представляет интерес для диагностики опухолевых заболеваний.

Цель исследования – выполнить сравнительный анализ экспрессии микроРНК в составе внеклеточных везикул и супернатанта плазмы крови больных РЛ и доноров и предложить на основании полученных результатов диагностическую панель для выявления пациентов с данной патологией.

Материалы и методы. из образцов крови доноров и больных РЛ методом последовательного центрифугирования была получена плазма крови. Затем из части супернатанта плазмы методом агрегации – осаждения полиэтиленгликолем/синим декстраном выделена фракция внеклеточных везикул (размером 40–150 нм). из обеих собранных фракций плазмы крови больных РЛ и доноров с использованием гуанидина изотиоцианата и октановой кислоты получены микроРНК. экспрессия 17 микроРНК, участвующих в механизмах развития РЛ, по нашим данным и данным литературы, в вышеупомянутых фракциях плазмы крови была проанализирована методом петлевой полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией.

Результаты. В ходе исследования во фракциях внеклеточных везикул и супернатанта плазмы крови обнаружены 29 и 10 пар микроРНК соответственно, экспрессия которых достоверно различалась между больными немелкоклеточным РЛ и донорами. Таким образом, внеклеточные везикулы плазмы обладают большим потенциалом с точки зрения диагностики РЛ на основе оценки относительной экспрессии микроРНК по сравнению с плазмой крови. Разработан диагностический алгоритм, основанный на исследовании аберрантной экспрессии 8 различных микроРНК (miRNA-30e, -1, -125b, -133, -222, -374, -425, -660) в составе 6 пар, позволяющий выявить немелкоклеточный РЛ II–IV стадии в 100 % случаев.

Заключение. внеклеточные везикулы являются более перспективными, диагностически значимыми микроРНК по сравнению с микроРНК плазмы крови. для диагностики больных немелкоклеточным РЛ предложена панель из 8 микроРНК, характеризующаяся 100 % чувствительностью и специфичностью.

Об авторах

М. Ю. Коношенко

ФГБУ «Институт химической биологии и фундаментальной медицины» Сибирского отделения Российской академии наук; ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. акад. Е.Н. Мешалкина» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: msol@ngs.ru
ORCID iD: 0000-0003-2925-9350

Коношенко Мария Юрьевна.

630090 Новосибирск, проспект Академика Лаврентьева, 8; 630055 Новосибирск, ул. Речкуновская, 15

Россия

П. П. Лактионов

ФГБУ «Институт химической биологии и фундаментальной медицины» Сибирского отделения Российской академии наук; ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. акад. Е.Н. Мешалкина» Минздрава России

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-0866-0252

630090 Новосибирск, проспект Академика Лаврентьева, 8; 630055 Новосибирск, ул. Речкуновская, 15

Россия

Ю. А. Ланцухай

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. акад. Е.Н. Мешалкина» Минздрава России

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0009-0004-4174-7300

630055 Новосибирск, ул. Речкуновская, 15

Россия

С. В. Пак

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. акад. Е.Н. Мешалкина» Минздрава России

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0009-0009-6221-2758

630055 Новосибирск, ул. Речкуновская, 15

Россия

С. Э. Красильников

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. акад. Е.Н. Мешалкина» Минздрава России

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-0687-0894

630055 Новосибирск, ул. Речкуновская, 15

Россия

О. Е. Брызгунова

ФГБУ «Институт химической биологии и фундаментальной медицины» Сибирского отделения Российской академии наук; ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. акад. Е.Н. Мешалкина» Минздрава России

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-3433-7261

630090 Новосибирск, проспект Академика Лаврентьева, 8; 630055 Новосибирск, ул. Речкуновская, 15

Россия

Список литературы

  1. Sung H., Ferlay J., Siegel R.L. et al. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin 2021;71(3):209–49. doi: 10.3322/caac.21660
  2. Eberhardt W.E., Pöttgen C., Gauler T.C. et al. Phase III study of surgery versus definitive concurrent chemoradiotherapy boost in patients with resectable stage IIIA(N2) and selected IIIB non-small-cell lung cancer after induction chemotherapy and concurrent chemoradiotherapy (ESPATUE). J Clin Oncol 2015;33(35):4194–201. doi: 10.1200/JCO.2015.62.6812
  3. Chang K., Wang H. The cancer genome atlas pan-cancer analysis project. Nat Genet 2013;45(10):1113–20. doi: 10.3779/j.issn.1009-3419.2015.04.02
  4. Sempere L.F., Azmi A.S., Moore A. microRNA-based diagnostic and therapeutic applications in cancer medicine. Wiley Interdiscip Rev RNA 2021;12(6):e1662. doi: 10.1002/wrna.1662
  5. Dhawan A., Scott J.G., Harris A.L., Buffa F.M. Pan-cancer characterisation of microRNA across cancer hallmarks reveals microRNA-mediated downregulation of tumour suppressors. Nat Commun 2018;9(1):5228. doi: 10.1038/s41467-018-07657-1
  6. He B., Zhao Z., Cai Q. et al. miRNA-based biomarkers, therapies, and resistance in cancer. Int J Biol Sci 2020;16(14):2628–47. doi: 10.7150/ijbs.4720
  7. Fredsøe J., Rasmussen A.K.I., Thomsen A.R. et al. Diagnostic and prognostic microRNA biomarkers for prostate cancer in cell-free urine. Eur Urol Focus 2018;4(6):825–33. doi: 10.1016/j.euf.2017.02.018
  8. Hu C., Meiners S., Lukas C. et al. Role of exosomal microRNAs in lung cancer biology and clinical applications. Cell Prolif 2020;53(6):e12828. doi: 10.1111/cpr.12828
  9. Yi M., Liao Z., Deng L. et al. High diagnostic value of miRNAs for NSCLC: quantitative analysis for both single and combined miRNAs in lung cancer. Ann Med 2021;53(1):2178–93. doi: 10.1080/07853890.2021.2000634
  10. Gao S., Guo W., Liu T. et al. Plasma extracellular vesicle microRNA profiling and the identification of a diagnostic signature for stage I lung adenocarcinoma. Cancer Sci 2022;113(2):648–59. doi: 10.1111/cas.15222
  11. Osipov I.D., Zaporozhchenko I.A., Bondar A.A. et al. Cell-free miRNA-141 and miRNA-205 as prostate cancer biomarkers. Adv Exp Med Biol 2016;924:9–12. doi: 10.1007/978-3-319-42044-8_2
  12. Zaporozhchenko I.A., Morozkin E.S., Ponomaryova A.A. et al. Profiling of 179 miRNA expression in blood plasma of lung cancer patients and cancer-free individuals. Sci Rep 2018;8(1):6348. doi: 10.1038/s41598-018-24769-2
  13. Li C., Yin Y., Liu X. et al. Non-small cell lung cancer associated microRNA expression signature: integrated bioinformatics analysis, validation and clinical significance. Oncotarget 2017;8(15):24564–78. doi: 10.18632/oncotarget.15596
  14. Huang W., Huang W., Hu J. et al. Two microRNA panels to discriminate three subtypes of lung carcinoma in bronchial brushing specimens. Am J Respir Crit Care Med 2012;186(11):1160–7. doi: 10.1164/rccm.201203-0534OC
  15. Wu C., Cao Y., He Z. et al. Serum levels of miR-19b and miR-146a as prognostic biomarkers for non-small cell lung cancer. Tohoku J Exp Med 2014;232(2):85–95. doi: 10.1620/tjem.232.85
  16. Boeri M., Verri C., Conte D. et al. MicroRNA signatures in tissues and plasma predict development and prognosis of computed tomography detected lung cancer. Proc Natl Acad Sci USA 2011;108(9):3713–8. doi: 10.1073/pnas.1100048108
  17. Zhou X., Wen W., Shan X. et al. A six-microRNA panel in plasma was identified as a potential biomarker for lung adenocarcinoma diagnosis. Oncotarget 2016;8(4):6513–25. doi: 10.18632/oncotarget.14311
  18. Liu M., Gao J., Huang Q. et al. Downregulating microRNA-144 mediates a metabolic shift in lung cancer cells by regulating GLUT1 expression. Oncol Lett 2016;11(6):3772–6. doi: 10.3892/ol.2016.4468
  19. Pan H.L., Wen Z.S., Huang Y.C. et al. Down-regulation of microRNA-144 in air pollution-related lung cancer. Sci Rep 2015;5:14331. doi: 10.1038/srep14331
  20. Zhang G., An H., Fang X. MicroRNA-144 regulates proliferation, invasion, and apoptosis of cells in malignant solitary pulmonary nodule via zinc finger E-box-binding homeobox 1. Int J Clin Exp Pathol 2015;8(5):5960–7.
  21. Ling B., Wang G.X., Long G. et al. Tumor suppressor miR-22 suppresses lung cancer cell progression through post-transcriptional regulation of ErbB3. J Cancer Res Clin Oncol 2012;138(8):1355–61. doi: 10.1007/s00432-012-1194-2
  22. Xin M., Qiao Z., Li J. et al. miR-22 inhibits tumor growth and metastasis by targeting ATP citrate lyase: evidence in osteosarcoma, prostate cancer, cervical cancer and lung cancer. Oncotarget 2014;7(28):44252–65. doi: 10.18632/oncotarget.10020
  23. Hosseini S.A., Seidi M., Yaghoobi H. Designed miR-19a/b sponge induces apoptosis in lung cancer cells through the PI3K-PTEN-Akt pathway regulation. Mol Biol Rep 2022;49(9):8485–93. doi: 10.1007/s11033-022-07670-0
  24. Zhang X., Wang X., Chai B. et al. Downregulated miR-18a and miR-92a synergistically suppress non-small cell lung cancer via targeting Sprouty 4. Bioengineered 2022;13(4):11281–95. doi: 10.1080/21655979.2022.2066755
  25. Reis P.P., Drigo S.A., Carvalho R.F. et al. Circulating miR-16-5p, miR-92a-3p, and miR-451a in plasma from lung cancer patients: potential application in early detection and a regulatory role in tumorigenesis pathways. Cancers 2020;12(8):2071. doi: 10.3390/cancers12082071
  26. Wang Z., Pan L., Yang L. et al. Long non-coding RNA GATA6-AS1 sponges miR-324-5p to inhibit lung cancer cell proliferation and invasion. Onco Targets Ther 2020;13:9741–51. doi: 10.2147/OTT.S256336
  27. Zhang Y., Xu H. Serum exosomal miR-378 upregulation is associated with poor prognosis in non-small-cell lung cancer patients. J Clin Lab Anal 2020;34(6):e23237. doi: 10.1002/jcla.23237
  28. Ji K.X., Cui F., Qu D. et al. MiR-378 promotes the cell proliferation of non-small cell lung cancer by inhibiting FOXG1. Eur Rev Med Pharmacol Sci 2018;22(4):1011–9. doi: 10.26355/eurrev_201802_14383
  29. Cao X., Zhong W., Guo S. et al. Low expression of miR-27b in serum exosomes of non-small cell lung cancer facilitates its progression by affecting EGFR. Open Med (Wars) 2022;17(1):816–25. doi: 10.1515/med-2022-0472
  30. Zhong S., Golpon H., Zardo P. et al. miRNAs in lung cancer. A systematic review identifies predictive and prognostic miRNA candidates for precision medicine in lung cancer. Transl Res 2021;230:164–96. doi: 10.1016/j.trsl.2020.11.012
  31. Konoshenko M.Y., Lekchnov E.A., Bryzgunova O.E. et al. Isolation of extracellular vesicles from biological fluids via the aggregation-precipitation approach for downstream miRNAs detection. Diagnostics 2012;11(3):384. doi: 10.3390/diagnostics11030384
  32. Lekchnov E.A., Zaporozhchenko I.A., Morozkin E.S. et al. Protocol for miRNA isolation from biofluids. Anal Biochem 2016;499:78–84. doi: 10.1016/j.ab.2016.01.025
  33. Konoshenko M.Y., Lekchnov E.A., Bryzgunova O.E. et al. The panel of 12 cell-Free microRNAs as potential biomarkers in prostate neoplasms. Diagnostics 2020;10(1):38. doi: 10.3390/diagnostics10010038
  34. Landoni E., Miceli R., Callari M. et al. Proposal of supervised data analysis strategy of plasma miRNAs from hybridisation array data with an application to assess hemolysis-related deregulation. BMC Bioinformatics 2015;16:388. doi: 10.1186/s12859-015-0820-9
  35. Bryzgunova O.E., Zaporozhchenko I.A., Lekchnov E.A. et al. Data analysis algorithm for the development of extracellular miRNA-based diagnostic systems for prostate cancer. PLoS One 2019;14(4):e0215003. doi: 10.1371/journal.pone.0215003
  36. Bryzgunova O.E., Konoshenko M.Y., Zaporozhchenko I.A. et al. Isolation of cell-free miRNA from biological fluids: influencing factors and methods. Diagnostics (Basel) 2021;11(5):865. doi: 10.3390/diagnostics11050865
  37. Dejima H., Iinuma H., Kanaoka R. et al. Exosomal microRNA in plasma as a non-invasive biomarker for the recurrence of non-small cell lung cancer. Oncol Lett 2017;13(3):1256–63. doi: 10.3892/ol.2017.5569
  38. Kanaoka R., Iinuma H., Dejima H. et al. Usefulness of plasma exosomal microRNA-451a as a noninvasive biomarker for early prediction of recurrence and prognosis of non-small cell lung cancer. Oncology 2018;94(5):311–23. doi: 10.1159/000487006
  39. Liu Q., Yu Z., Yuan S. et al. Circulating exosomal microRNAs as prognostic biomarkers for non-small-cell lung cancer. Oncotarget 2017;8(8):13048–58. doi: 10.18632/oncotarget.14369
  40. Munagala R., Aqil F., Gupta R.C. Exosomal miRNAs as biomarkers of recurrent lung cancer. Tumor Biol 2016;37(8):10703–14. doi: 10.1007/s13277-016-4939-8
  41. Silva J., García V., Zaballos Á. et al. Vesicle-related microRNAs in plasma of nonsmall cell lung cancer patients and correlation with survival. Eur Respir J 2011;37(3):617–23. doi: 10.1183/09031936.00029610
  42. Zhuang L., Shou T., Li K. et al. MicroRNA-30e-5p promotes cell growth by targeting PTPN13 and indicates poor survival and recurrence in lung adenocarcinoma. J Cell Mol Med 2017;21(11):2852–62. doi: 10.1111/jcmm.13198
  43. Li W., Yang P., Zhong C. et al. The circ-PITX1 promotes non-small cell lung cancer development via the miR-30e-5p/ITGA6 axis. Cell Cycle 2022;21(3):304–21. doi: 10.1080/15384101.2021.2020041
  44. Dong W., Zhang H., Dai Y. et al. circRNA circFAT1(e2) Elevates the development of non-small-cell lung cancer by regulating miR-30e-5p and USP22. BioMed Res Int 2021;2021:6653387. doi: 10.1155/2021/6653387
  45. Gao W., Shen H., Liu L. et al. MiR-21 overexpression in human primary squamous cell lung carcinoma is associated with poor patient prognosis. J Cancer Res Clin Oncol 2011;137(4):557–66. doi: 10.1007/s00432-010-0918-4
  46. Ning Z.Q., Lu H.L., Chen C. et al. MicroRNA-30e reduces cell growth and enhances drug sensitivity to gefitinib in lung carcinoma. Oncotarget 2017;8(3):4572–81. doi: 10.18632/oncotarget.13944
  47. Silva J., García V., Zaballos Á. et al. Vesicle-related microRNAs in plasma of nonsmall cell lung cancer patients and correlation with survival. Eur Respir J 2011;37(3):617–23. doi: 10.1183/09031936.00029610
  48. Turchinovich A., Burwinkel B. Distinct AGO1 and AGO2 associated miRNA profiles in human cells and blood plasma. RNA Biol 2012;9(8):1066–75. doi: 10.4161/rna.21083
  49. Lunavat T.R., Lesley C., Dae-Kyum K. et al. Small RNA deep sequencing discriminates subsets of extracellular vesicles released by melanoma cells – evidence of unique microRNA cargos. RNA Biol 2015;12(8):810–23. doi: 10.1080/15476286.2015.1056975
  50. Huang X., Tiezheng Y., Tschannen M. et al. Characterization of human plasma-derived exosomal RNAs by deep sequencing. BMC Genomics 2013;14:319. doi: 10.1186/1471-2164-14-319
  51. Markou A., Sourvinou I., Vorkas P.A. et al. Clinical evaluation of microRNA expression profiling in non small cell lung cancer. Lung Cancer 2013;81(3):388–96. doi: 10.1016/j.lungcan.2013.05.007
  52. Cui Y., Zhao L., Zhao S. et al. MicroRNA-30e inhibits proliferation and invasion of non-small cell lung cancer via targeting SOX9. Human Cell 2019;32(3):326–33. doi: 10.1007/s13577-018-0223-0
  53. Xu G., Cai J., Wang L. et al. MicroRNA-30e-5p suppresses non-small cell lung cancer tumorigenesis by regulating USP22-mediated Sirt1/JAK/STAT3 signaling. Exp Cell Res 2018;362(2):268–78. doi: 10.1016/j.yexcr.2017.11.027
  54. He J., Jin S., Zhang W. et al. Long non-coding RNA LOC554202 promotes acquired gefitinib resistance in non-small cell lung cancer through upregulating miR-31 expression. J Cancer 2019;10(24):6003–13. doi: 10.7150/jca.35097
  55. Liu X., Sempere L.F., Ouyang H. et al. MicroRNA-31 functions as an oncogenic microRNA in mouse and human lung cancer cells by repressing specific tumor suppressors. J Clin Invest 2010;120(4):1298–309. doi: 10.1172/JCI39566
  56. Zhu C., Wang S., Zheng M. et al. miR-31-5p modulates cell progression in lung adenocarcinoma through TNS1/p53 axis. Strahlenther Onkol 2022;198(3):304–14. doi: 10.1007/s00066-021-01895-x
  57. Hou C., Sun B., Jiang Y. et al. MicroRNA-31 inhibits lung adenocarcinoma stem-like cells via down-regulation of MET-PI3K-Akt signaling pathway. Anticancer Agents Med Chem 2016;16(4):501–18. doi: 10.2174/1871520615666150824152353
  58. Zhang J., Li D., Zhang Y. et al. Integrative analysis of mRNA and miRNA expression profiles reveals seven potential diagnostic biomarkers for non-small cell lung cancer. Oncol Rep 2020;43(1):99–112. doi: 10.3892/or.2019.7407
  59. Cheng X., Sha M., Jiang W. et al. LINC00174 suppresses non-small cell lung cancer progression by up-regulating LATS2 via sponging miR-31-5p. Cell J 2022;24(3):140–7. doi: 10.22074/cellj.2022.7991
  60. Wang Y., Shang S., Yu K. et al. miR-224, miR-147b and miR-31 associated with lymph node metastasis and prognosis for lung adenocarcinoma by regulating PRPF4B, WDR82 or NR3C2. Peer J 2020;8:e9704. doi: 10.7717/peerj.9704
  61. Meng W., Ye Z., Cui R. et al. MicroRNA-31 predicts the presence of lymph node metastases and survival in patients with lung adenocarcinoma. Clin Cancer Res 2013;19(19):5423–33. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-13-0320
  62. Zeng X., Liu D., Peng G. et al. MiroRNA-31-3p promotes the invasion and metastasis of non-small-cell lung cancer cells by targeting forkhead Box 1 (FOXO1). Comput Math Methods Med 2022;2022:4597087. doi: 10.1155/2022/4597087
  63. Sun X., Zhang S., Ma X. Prognostic value of microRNA-125 in various human malignant neoplasms: a meta-analysis Clin Lab 2015;61(11):1667–74. doi: 10.7754/clin.lab.2015.150408
  64. Kazempour Dizaji M., Farzanegan B., Bahrami N. et al. Expression of miRNA1, miRNA133, miRNA191, and miRNA24, as good biomarkers, in non-small cell lung cancer using real-time PCR method. Asian Pac J Cancer Prev 2022;23(5):1565–70. doi: 10.31557/APJCP.2022.23.5.1565
  65. Liu S., Chen J., Zhang T. et al. MicroRNA-133 inhibits the growth and metastasis of the human lung cancer cells by targeting epidermal growth factor receptor. J BUON 2012;24(3):929–35.
  66. Liu G., Li Y.I., Gao X. Overexpression of microRNA-133b sensitizes non-small cell lung cancer cells to irradiation through the inhibition of glycolysis. Oncol Lett 2016;11(4):2903–8. doi: 10.3892/ol.2016.4316
  67. Wei G., Xu Y., Peng T. et al. miR-133 involves in lung adenocarcinoma cell metastasis by targeting FLOT2. Artif Cells Nanomed Biotechnol 2018;46(2):224–30. doi: 10.1080/21691401.2017.1324467
  68. Xiao B., Liu H., Gu Z. et al. Expression of microRNA-133 inhibits epithelial-mesenchymal transition in lung cancer cells by directly targeting FOXQ1. Arch Bronconeumol 2016;52(10):505–11. doi: 10.1016/j.arbres.2015.10.016
  69. Xu M., Wang Y.Z. miR-133a suppresses cell proliferation, migration and invasion in human lung cancer by targeting MMP-14. Oncol Rep 2013;30(3):1398–404. doi: 10.3892/or.2013.2548
  70. Peinado P., Andrades A., Martorell-Marugán J. et al. The SWI/SNF complex regulates the expression of miR-222, a tumor suppressor microRNA in lung adenocarcinoma. Human Mol Gen 2021;30(23):2263–71. doi: 10.1093/hmg/ddab187
  71. Wu Q., Yu L., Lin X. et al. Combination of serum miRNAs with serum exosomal miRNAs in early diagnosis for non-small-cell lung cancer. Cancer Manag Res 2020;12:485–95. doi: 10.2147/CMAR.S232383
  72. Chen W., Li X. MiR-222-3p promotes cell proliferation and inhibits apoptosis by targeting PUMA (BBC3) in non-small cell lung cancer. Technol Cancer Res Treat 2020;19:1533033820922558. doi: 10.1177/1533033820922558
  73. Garofalo M., Romano G., Di Leva G. et al. EGFR and MET receptor tyrosine kinase-altered microRNA expression induces tumorigenesis and gefitinib resistance in lung cancers. Nat Med 2011;18:74–82. doi: 10.1038/nm.2577
  74. Mao K.P., Zhang W.N., Liang X.M. et al. MicroRNA-222 expression and its prognostic potential in non-small cell lung cancer. Sci World J 2014;908326. doi: 10.1155/2014/908326
  75. Zhong C., Ding S., Xu Y. et al. MicroRNA-222 promotes human non-small cell lung cancer H460 growth by targeting p27. Int J Clin Exp Med 2015;8(4):5534–40.
  76. Sun Q., Jiang C.W., Tan Z.H. et al. MiR-222 promotes proliferation, migration and invasion of lung adenocarcinoma cells by targeting ETS1. Eur Rev Med Pharmacol Sci 2017;21(10):2385–91.
  77. Hetta H.F., Zahran A.M., El-Mahdy R.I. et al. Assessment of circulating miRNA-17 and miRNA-222 expression profiles as non-invasive biomarkers in egyptian patients with non-small-cell lung cancer. Asian Pac J Cancer Prev 2019;20(6):1927–33. doi: 10.31557/APJCP.2019.20.6.1927
  78. Kim Y., Sim J., Kim H. et al. MicroRNA-374a expression as a prognostic biomarker in lung adenocarcinoma. J Pathol Transl Med 2019;53(6):354–60. doi: 10.4132/jptm.2019.10.01
  79. Wang G., Ji X., Li P. et al. Human bone marrow mesenchymal stem cell-derived exosomes containing microRNA-425 promote migration, invasion and lung metastasis by down-regulating CPEB1. Regen Ther 2022;20:107–16. doi: 10.1016/j.reth.2022.03.007
  80. Guo Z., Ye H., Zheng X. et al. Extracellular vesicle-encapsulated microRNA-425-derived from drug-resistant cells promotes non-small-cell lung cancer progression through DAPK1-medicated PI3K/AKT pathway. J Cell Physiol 2021;236(5):3808–20. doi: 10.1002/jcp.30126
  81. Zhou J.S., Yang Z.S., Cheng S.Y. et al. miRNA-425-5p enhances lung cancer growth via the PTEN/PI3K/AKT signaling axis. BMC Pulm Med 2020;20(1):223. doi: 10.1186/s12890-020-01261-0
  82. Jiang L., Ge W., Geng J. miR-425 regulates cell proliferation, migration and apoptosis by targeting AMPH-1 in non-small-cell lung cancer. Pathol Res Pract 2019;215(12):152705. doi: 10.1016/j.prp.2019.152705.
  83. Fu Y., Li Y., Wang X. et al. Overexpression of miR-425-5p is associated with poor prognosis and tumor progression in non-small cell lung cancer. Cancer Biomark 2020;27(2):147–56. doi: 10.3233/cbm-190782
  84. Yuwen D., Ma Y., Wang D. et al. Prognostic role of circulating exosomal miR-425-3p for the response of NSCLC to platinum-based chemotherapy. Cancer Epidemiol Biomark Prevent 2019;28(1):163–73. doi: 10.1158/1055-9965.epi-18-0569
  85. Fortunato O., Boeri M., Moro M. et al. Mir-660 is downregulated in lung cancer patients and its replacement inhibits lung tumorigenesis by targeting MDM2-p53 interaction. Cell Death Dis 2014;5(12):e1564. doi: 10.1038/cddis.2014.507
  86. Qi Y., Zha W., Zhang W. Exosomal miR-660-5p promotes tumor growth and metastasis in non-small cell lung cancer. J BUON 2019;24(2):599–607.
  87. Moro M., Di Paolo D., Milione M. et al. Coated cationic lipid-nanoparticles entrapping miR-660 inhibit tumor growth in patient-derived xenografts lung cancer models. J Control Release 2019;308:44–56. doi: 10.1016/j.jconrel.2019.07.006

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ,


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 57560 от  08.04.2014.