Герминативные и соматические нарушения гена NBN и их возможная роль в патогенезе злокачественных новообразований

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Нарушение механизмов поддержания стабильности генома является важным условием опухолевой прогрессии. По этой причине предрасположенность к развитию новообразований нередко связана с носительством герминативных мутаций в генах систем детекции и репарации повреждений ДНК. Вместе с тем нарушение систем репарации может служить фактором прогноза эффективности противоопухолевой терапии, а гиперэкспрессия отвечающих за репарацию ДНК генов является частым событием в различных типах новообразований, которое может приводить к приобретению опухолевыми клетками устойчивости к химио- и радиотерапии. Ген NBN (нибрин) кодирует субъединицу MRN-комплекса, являющегося сенсором двунитевых разрывов ДНК и участвующего в их репарации путем гомологичной рекомбинации. Ассоциированные с повышенным риском развития опухолей герминативные мутации NBN, представленные в первую очередь инделами, приводящими к сдвигу рамки считывания и синтезу укороченных форм белка, а также нонсенс- и некоторыми миссенс-мутациями в функционально значимых доменах, обусловливают частичную утрату нибрином своих функций и увеличение числа спонтанных и индуцированных хромосомных аберраций в клетках носителей. Среди соматических мутаций, затрагивающих NBN в опухолевых клетках, преобладают амплификации локуса этого гена, что указывает на двойственную роль белка NBN в опухолевой прогрессии. Результаты немногочисленных исследований влияния уровня экспрессии NBN и его мутационного статуса на устойчивость конкретных типов опухолевых клеток к применяемым в терапии злокачественных новообразований препаратам и выживаемость пациентов указывают на необходимость углубленного исследования функциональной значимости различных вариантов, поскольку статус NBN может иметь значение при выборе тактики лечения некоторых типов опухолей.

Об авторах

О. М. Кривцова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: o.krivtsova@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0002-0207-2724

Ольга Михайловна Кривцова

115552 Москва, Каширское шоссе, 24

Россия

Д. Д. Озерова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0009-0005-2450-8452

115552 Москва, Каширское шоссе, 24

Россия

Н. Л. Лазаревич

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-9560-1383

115552 Москва, Каширское шоссе, 24

119991 Москва, Ленинские горы, 1, стр. 12

Россия

Список литературы

  1. Hanahan D., Weinberg R.A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell 2011;144(5):646–74. doi: 10.1016/j.cell.2011.02.013
  2. The ICGC/TCGA pan-cancer analysis of whole genomes consortium. Pan-cancer analysis of whole genomes. Nature 2020;578(7793):82–93. doi: 10.1038/s41586-020-1969-6
  3. McFarland C.D., Yaglom J.A., Wojtkowiak J.W. et al. The damaging effect of passenger mutations on cancer progression. Cancer Res 2017;77(18):4763–72. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-15-3283-T
  4. Li Q., Qian W., Zhang Y. et al. A new wave of innovations within the DNA damage response. Signal Transduct Target Ther 2023;8(1):338. doi: 10.1038/s41392-023-01548-8
  5. Toh M., Ngeow J. Homologous recombination deficiency: cancer predispositions and treatment implications. Oncologist 2021;26(9):e1526–37. doi: 10.1002/onco.13829
  6. Bertelsen B., Tuxen I.V., Yde C.W. et al. High frequency of pathogenic germline variants within homologous recombination repair in patients with advanced cancer. NPJ Genom Med 2019;4:13. doi: 10.1038/s41525-019-0087-6
  7. Gao P., Ma N., Li M. et al. Functional variants in NBS1 and cancer risk: evidence from a meta-analysis of 60 publications with 111 individual studies. Mutagenesis 2013;28(6):683–97. doi: 10.1093/mutage/get048
  8. Otahalova B., Volkova Z., Soukupova J. et al. Importance of germline and somatic alterations in human MRE11, RAD50, and NBN genes coding for MRN complex. Int J Mol Sci 2023;24(6):5612. doi: 10.3390/ijms24065612
  9. Takai K., Sakamoto S., Sakai T. et al. A potential link between alternative splicing of the NBS1 gene and DNA damage/environmental stress. Radiat Res 2008;170(1):33–40. doi: 10.1667/RR1191.1
  10. Bian L., Meng Y., Zhang M., Li D. MRE11-RAD50-NBS1 complex alterations and DNA damage response: implications for cancer treatment. Mol Cancer 2019;18(1):169. doi: 10.1186/s12943-019-1100-5
  11. Hari F.J., Spycher C., Jungmichel S. et al. A divalent FHA/BRCTbinding mechanism couples the MRE11-RAD50-NBS1 complex to damaged chromatin. EMBO Rep 2010;11(5):387–92. doi: 10.1038/embor.2010.30
  12. Stiff T., Cerosaletti K., Concannon P. et al. Replication independent ATR signalling leads to G2/M arrest requiring Nbs1, 53BP1 and MDC1. Hum Mol Genet 2008;17(20):3247–53. doi: 10.1093/hmg/ddn220
  13. Kim J.H., Grosbart M., Anand R. et al. The Mre11-Nbs1 interface is essential for viability and tumor suppression. Cell Rep 2017;18(2):496–507. doi: 10.1016/j.celrep.2016.12.035
  14. Rai R., Hu C., Broton C. et al. NBS1 phosphorylation status dictates repair choice of dysfunctional telomeres. Mol Cell 2017;65(5):801–17.e4. doi: 10.1016/j.molcel.2017.01.016
  15. Tseng S.F., Chang C.Y., Wu K.J., Teng S.C. Importin KPNA2 is required for proper nuclear localization and multiple functions of NBS1. J Biol Chem 2005;280(47):39594–600. doi: 10.1074/jbc.M508425200
  16. Varon R., Demuth I., Chrzanowska K.H. Nijmegen breakage syndrome. In: GeneReviews. Ed. by M.P. Adam, J. Feldman, G.M. Mirzaa et al. Seattle (WA): University of Washington, Seattle, 1999. Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1176/.
  17. Sharapova S.O., Pashchenko O.E., Bondarenko A.V. et al. Geographical distribution, incidence, malignancies, and outcome of 136 Eastern slavic patients with Nijmegen Breakage Syndrome and NBN founder variant c.657_661del5. Front Immunol 2021;11:602482. doi: 10.3389/fimmu.2020.602482
  18. Cilli D., Mirasole C., Pennisi R. et al. Identification of the interactors of human nibrin (NBN) and of its 26 kDa and 70 kDa fragments arising from the NBN 657del5 founder mutation. PLoS One 2014;9(12):e114651. doi: 10.1371/journal.pone.0114651
  19. Maser R.S., Zinkel R., Petrini J.H. An alternative mode of translation permits production of a variant NBS1 protein from the common Nijmegen breakage syndrome allele. Nat Genet 2001;27(4):417–21. doi: 10.1038/86920
  20. Lins S., Kim R., Krüger L. et al. Clinical variability and expression of the NBN c.657del5 allele in Nijmegen Breakage Syndrome. Gene 2009;447(1):12–7. doi: 10.1016/j.gene.2009.07.013
  21. Belhadj S., Khurram A., Bandlamudi C. et al. NBN pathogenic germline variants are associated with pan-cancer susceptibility and in vitro DNA damage response defects. Clin Cancer Res 2023;29(2):422–31. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-22-1703
  22. Dzikiewicz-Krawczyk A., Mosor M., Januszkiewicz D., Nowak J. Impact of heterozygous c.657-661del, p.I171V and p.R215W mutations in NBN on nibrin functions. Mutagenesis 2012;27(3):337–43. doi: 10.1093/mutage/ger084
  23. Nowak J., Świątek-Kościelna B., Kałużna E.M. et al. Effect of irradiation on DNA synthesis, NBN gene expression and chromosomal stability in cells with NBN mutations. Arch Med Sci 2017;13(2):283–92. doi: 10.5114/aoms.2017.65452
  24. Yamamoto Y., Miyamoto M., Tatsuda D. et al. A rare polymorphic variant of NBS1 reduces DNA repair activity and elevates chromosomal instability. Cancer Res 2014;74(14):3707–15. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-13-3037
  25. Sherry S.T., Ward M.H., Kholodov M. et al. dbSNP: the NCBI database of genetic variation. Nucleic Acids Res 2001;29(1):308–11. doi: 10.1093/nar/29.1.308
  26. Landrum M.J., Lee J.M., Riley G.R. et al. ClinVar: public archive of relationships among sequence variation and human phenotype. Nucleic Acids Res 2014;42:D980–5. doi: 10.1093/nar/gkt1113
  27. Cerosaletti K.M., Concannon P. Nibrin forkhead-associated domain and breast cancer C-terminal domain are both required for nuclear focus formation and phosphorylation. J Biol Chem 2003;278(24):21944–51. doi: 10.1074/jbc.M211689200
  28. Tomioka K., Miyamoto T., Akutsu S.N. et al. NBS1 I171V variant underlies individual differences in chromosomal radiosensitivity within human populations. Sci Rep 2021;11(1):19661. doi: 10.1038/s41598-021-98673-7
  29. Warcoin M., Lespinasse J., Despouy G. et al. Fertility defects revealing germline biallelic nonsense NBN mutations. Hum Mutat 2009;30(3):424–30. doi: 10.1002/humu.20904
  30. Varon R., Vissinga C., Platzer M. et al. Nibrin, a novel DNA double-strand break repair protein, is mutated in Nijmegen breakage syndrome. Cell 1998;93(3):467–76. doi: 10.1016/s0092-8674(00)81174-5
  31. Gass J., Jackson J., Macklin S. et al. A case of contralateral breast cancer and skin cancer associated with NBN heterozygous pathogenic variant c.698_701delAACA. Fam Cancer 2017;16(4):551–3. doi: 10.1007/s10689-017-9982-0
  32. Ramus S.J., Song H., Dicks E. et al. Germline mutations in the BRIP1, BARD1, PALB2, and NBN genes in women with ovarian cancer. J Natl Cancer Inst 2015;107(11):djv214. doi: 10.1093/jnci/djv214
  33. Wu Y., Yu H., Li S. et al. Rare germline pathogenic mutations of DNA repair genes are most strongly associated with grade group 5 prostate cancer. Eur Urol Oncol 2020;3(2):224–30. doi: 10.1016/j.euo.2019.12.003
  34. Susswein L.R., Marshall M.L., Nusbaum R. et al. Pathogenic and likely pathogenic variant prevalence among the first 10,000 patients referred for next-generation cancer panel testing. Genet Med 2016;18(8):823–32. doi: 10.1038/gim.2015.166
  35. Nakanishi K., Taniguchi T., Ranganathan V. et al. Interaction of FANCD2 and NBS1 in the DNA damage response. Nat Cell Biol 2002;4(12):913–20. doi: 10.1038/ncb879
  36. Desmond A., Kurian A.W., Gabree M. et al. Clinical actionability of multigene panel testing for hereditary breast and ovarian cancer risk assessment. JAMA Oncol 2015;1(7):943–51. doi: 10.1001/jamaoncol.2015.2690
  37. Gao J., Aksoy B.A., Dogrusoz U. et al. Integrative analysis of complex cancer genomics and clinical profiles using the cBioPortal. Sci Signal 2013;6(269):pl1. doi: 10.1126/scisignal.2004088
  38. Zehir A., Benayed R., Shah R.H. et al. Mutational landscape of meta-static cancer revealed from prospective clinical sequencing of 10,000 patients. Nat Med 2017;23(6):703–13. doi: 10.1038/nm.4333
  39. Wu Z., Li S., Tang X. et al. Copy number amplification of DNA damage repair pathways potentiates therapeutic resistance in cancer. Theranostics 2020;10(9):3939–51. doi: 10.7150/thno.39341
  40. Gan M., Tai Z., Yu Y. et al. Next-generation sequencing shows the genomic features of ovarian clear cell cancer and compares the genetic architectures of high-grade serous ovarian cancer and clear cell carcinoma in ovarian and endometrial tissues. Peer J 2023;11:e14653. doi: 10.7717/peerj.14653
  41. Berlin A., Lalonde E., Sykes J. et al. NBN gain is predictive for adverse outcome following image-guided radiotherapy for localized prostate cancer. Oncotarget 2014;5(22):11081–90. doi: 10.18632/oncotarget.2404
  42. Shi Z., Chen B., Han X. et al. Genomic and molecular landscape of homologous recombination deficiency across multiple cancer types. Sci Rep 2023;13(1):8899. doi: 10.1038/s41598-023-35092-w
  43. Goldman M.J., Craft B., Hastie M. et al. Visualizing and interpreting cancer genomics data via the Xena platform. Nat Biotechnol 2020;38(6):675–8. doi: 10.1038/s41587-020-0546-8
  44. Cancer Genome Atlas Research Network, Weinstein J.N., Collisson E.A. et al. The Cancer Genome Atlas Pan-Cancer analysis project. Nat Genet 2013;45(10):1113–20. doi: 10.1038/ng.2764
  45. Wang M., Chen S., Ao D. Targeting DNA repair pathway in cancer: mechanisms and clinical application. MedComm (2020) 2021;2(4):654–91. doi: 10.1002/mco2.103
  46. Stewart M.D., Merino Vega D., Arend R.C. et al. Homologous recombination deficiency: concepts, definitions, and assays. Oncologist 2022;27(3):167–74. doi: 10.1093/oncolo/oyab053
  47. Huang R.X., Zhou P.K. DNA damage response signaling pathways and targets for radiotherapy sensitization in cancer. Signal Transduct Target Ther 2020;5(1):60. doi: 10.1038/s41392-020-0150-x
  48. Zhong A., Cheng C.S., Lu R.Q., Guo L. Suppression of NBS1 upregulates cyclinb to induce olaparib sensitivity in ovarian cancer. Technol Cancer Res Treat 2024;23:15330338231212085. doi: 10.1177/15330338231212085
  49. Risdon E.N., Chau C.H., Price D.K. et al. PARP inhibitors and prostate cancer: to infinity and beyond BRCA. Oncologist 2021;26(1):e115–29. doi: 10.1634/theoncologist.2020-0697
  50. McCabe N., Turner N.C., Lord C.J. et al. Deficiency in the repair of DNA damage by homologous recombination and sensitivity to poly(ADP-ribose) polymerase inhibition. Cancer Res 2006;66(16):8109–15. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-06-0140
  51. Eich M., Roos W.P., Dianov G.L. et al. Nijmegen breakage syndrome protein (NBN) causes resistance to methylating anticancer drugs such as temozolomide. Mol Pharmacol 2010;78(5):943–51. doi: 10.1124/mol.110.066076

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ,



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 57560 от  08.04.2014.