Preview

Успехи молекулярной онкологии

Расширенный поиск

Вирус Эпштейна–Барр и механизмы молекулярного канцерогенеза

https://doi.org/10.17650/2313-805X-2025-12-2-22-34

Аннотация

Вирус Эпштейна–Барр (ВЭБ) широко распространен среди населения планеты и обусловливает возникновение многих злокачественных новообразований человека. Механизм ВЭБ-ассоциированного канцерогенеза заключается в способности вирусных белков и микроРНк вызывать генетические и эпигенетические изменения, которые могут прямо или косвенно стимулировать клеточный рост, ингибируя апоптоз или защищая опухолевые клетки от влияния, оказываемого на них микроокружением и иммунным ответом хозяина, приводить к развитию таких злокачественных новообразований, как лимфома Беркитта, лимфома Ходжкина, рак носоглотки, желудка и др. В обзоре рассмотрены молекулярные механизмы канцерогенеза, ассоциированного с ВЭБ, способствующие выживанию этого вируса в клетках хозяина и регулирующие онкобелки. проанализированы результаты более 500 исследований, проведенных преимущественно в последние 10 лет, из баз данных PubMed, Google Scholar, ResearchGate, Web of Science, РиНЦ (Российский индекс научного цитирования) и CyberLeninka.

Анализ научной литературы показал, что ВЭБ обладает большим арсеналом механизмов для уклонения от иммунного надзора, что обеспечивает его пожизненную персистенцию в организме человека. ключевую роль в этом играет экспрессия латентных белков (в частности, EBNA1, LMP1 и LMP2A), которые модулируют сигнальные пути клеток хозяина, подавляют апоптоз и изменяют иммунный ответ. Также установлено, что тип латентности, поддерживаемый в инфицированных клетках, влияет на вероятность злокачественной трансформации. Например, латентность II типа характерна для большинства эпителиальных опухолей, тогда как латентность III типа ассоциирована с лимфомами. переход из латентной в литическую фазу сопровождается экспрессией белков, способствующих онкогенезу. Особое внимание в литературе уделяется роли онкопротеинов LMP1 и LMP2A, которые активируют PI3K/AKT и JAK/STAT пути, нарушая регуляцию клеточной пролиферации и апоптоза. ВЭБ-индуцированные опухоли часто характеризуются эпигенетическими изменениями, поддерживающими вирусную персистенцию и рост опухолевых клеток. Таким образом, ВЭБ способен оказывать мультифакторное влияние на клетку-хозяина, что делает его важным объектом изучения в онковирусологии. Это подтверждает необходимость дальнейших исследований для уточнения молекулярных механизмов канцерогенеза и разработки таргетных терапевтических подходов к лечению ВЭБ-ассо циированных опухолей.

Об авторах

А. Д. Молчанов
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России; ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Россия

Артем Дмитриевич Молчанов

115522 Москва, Каширское шоссе, 24

119991 Москва, ул. Трубецкая, 8, стр. 2



А. С. Васильева
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

115522 Москва, Каширское шоссе, 24



К. В. Смирнова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

115522 Москва, Каширское шоссе, 24



М. В. Немцова
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Россия

119991 Москва, ул. Трубецкая, 8, стр. 2



Список литературы

1. Kuri A., Jacobs B.M., Jacobs B.M. et al. Epidemiology of Epstein–Barr virus infection and infectious mononucleosis in the United Kingdom. BMC Public Health 2020;20:1–9. DOI: 10.1186/S12889-020-09049-X/TABLES/3

2. Ok C.Y., Li L., Young K.H. EBV-driven B-cell lymphoproliferative disorders: from biology, classification and differential diagnosis to clinical management. Exp Mol Med 2015;47(1):e132. DOI: 10.1038/emm.2014.82

3. Shannon-Lowe C., Rickinson A.B., Bell A.I. Epstein–Barr virus-associated lymphomas. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci 2017;372(1732):20160271. DOI: 10.1098/RSTB.2016.0271

4. Lung R.W.M., Tong J.H.M., To K.F. Emerging roles of small Epstein–Barr virus derived non-coding RNAs in epithelial malignancy. Int J Mol Sci 2013;14(9):17378–409. DOI: 10.3390/IJMS140917378

5. Farahmand M., Monavari S.H., Shoja Z. et al. Epstein–Barr virus and risk of breast cancer: a systematic review and meta-analysis. Future Oncol 2019;15(24):2873–85. DOI: 10.2217/FON-2019-0232

6. Shimakage M., Kawahara K., Harada S. et al. Expression of Epstein–Barr virus in renal cell carcinoma. Oncol Rep 2007;18(1):41–6. DOI: 10.3892/OR.18.1.41

7. Young L.S., Yap L.F., Murray P.G. Epstein–Barr virus: more than 50 years old and still providing surprises. Nat Rev Cancer 2016;16(12):789–802. DOI: 10.1038/nrc.2016.92

8. Stomach. Cancer today. Globocan 2022. Available at: https://gco.iarc.who.int/media/factsheets/cancers/7-stomach-fact-sheet.pdf

9. Peterson B.R., Nelson B.L. Nonkeratinizing undifferentiated nasopharyngeal carcinoma. Head Neck Pathol 2013;7(1):73–5. DOI: 10.1007/S12105-012-0401-4

10. Jemal A., Bray F., Center M.M. et al. Global cancer statistics. CA Cancer J Clin 2011;61(2):69–90. DOI: 10.3322/CAAC.20107

11. Nasopharynx. Cancer today. Globocan 2022. Available at: https://gco.iarc.who.int/media/globocan/factsheets/cancers/4-nasopharynx-fact-sheet.pdf

12. Catalano V., Labianca R., Beretta G.D. et al. Gastric cancer. Crit Rev Oncol Hematol 2009;71(2):127–64. DOI: 10.1016/J.CRITREVONC.2009.01.004

13. Tavakoli A., Monavari S.H., Solaymani Mohammadi F. et al. Association between Epstein–Barr virus infection and gastric cancer: a systematic review and meta-analysis. BMC Cancer 2020;20(1):493. DOI: 10.1186/S12885-020-07013-X

14. Camargo M.C., Kim W.H., Chiaravalli A.M. et al. Improved survival of gastric cancer with tumour Epstein–Barr virus positivity: an international pooled analysis. Gut 2014;63(2):236–43. DOI: 10.1136/GUTJNL-2013-304531

15. Higuchi H., Yamakawa N., Imadome K.I. et al. Role of exosomes as a proinflammatory mediator in the development of EBV-associated lymphoma. Blood 2018;131(23):2552–67. DOI: 10.1182/BLOOD-2017-07-794529

16. Lo A.K.F., Dawson C.W., Lung H.L. et al. The role of EBV-encoded LMP1 in the NPC tumor microenvironment: from function to therapy. Front Oncol 2021;11:640207. DOI: 10.3389/FONC.2021.640207/BIBTEX

17. Chen W., Xie Y., Wang T. et al. New insights into Epstein–Barr virus-associated tumors: exosomes (review). Oncol Rep 2022;47(1):13. DOI: 10.3892/or.2021.8224 18. Machón C., Fàbrega-Ferrer M., Zhou D. et al. Atomic structure of the Epstein–Barr virus portal. Nat Commun 2019;10(1):1–7. DOI: 10.1038/s41467-019-11706-8

18. Price A.M., Luftig M.A. Dynamic Epstein–Barr virus gene expression on the path to B-cell transformation. Adv Virus Res 2014;88:279–313. DOI: 10.1016/B978-0-12-800098-4.00006-4

19. Smatti M.K., Al-Sadeq D.W., Ali N.H. et al. Epstein–Barr virus epidemiology, serology, and genetic variability of LMP-1 oncogene among healthy population: an update. Front Oncol 2018;8:211. DOI: 10.3389/FONC.2018.00211

20. Zhang A., Liu Q., Zhao H. et al. Phenotypic characterization of nanshi oral liquid alters metabolic signatures during disease prevention. Sci Rep 2016;6:1–10. DOI: 10.1038/srep19333

21. Liang C.L., Chen J.L., Hsu Y.P.P. et al. Epstein–Barr virus BZLF1 gene is activated by transforming growth factor-beta through cooperativity of Smads and c-Jun/c-Fos proteins. J Biol Chem 2002;277(26):23345–57. DOI: 10.1074/JBC.M107420200

22. Zhao M., Nanbo A., Becnel D. et al. Ubiquitin modification of the Epstein–Barr virus immediate early transactivator Zta. J Virol 2020;94(22):e01298–20. DOI: 10.1128/JVI.01298-20

23. Soldan S.S., Lieberman P.M. Epstein–Barr virus and multiple sclerosis. Nat Rev Microbiol 2022;21(1):51–64. DOI: 10.1038/s41579-022-00770-5

24. Long X., Yang Z., Li Y. et al. BRLF1-dependent viral and cellular transcriptomes and transcriptional regulation during EBV primary infection in B lymphoma cells. Genomics 2021;113(4):2591–604. DOI: 10.1016/J.YGENO.2021.05.039

25. Huang W., Bai L., Tang H. Epstein–Barr virus infection: the micro and macro worlds. Virol J 2023;20(1):1–13. DOI: 10.1186/S12985-023-02187-9/TABLES/1

26. Murata T., Sugimoto A., Inagaki T. et al. Molecular basis of Epstein–Barr virus latency establishment and lytic reactivation. Viruses 2021;13(12):2344. DOI: 10.3390/V13122344

27. Middleton T., Sugden B. Retention of plasmid DNA in mammalian cells is enhanced by binding of the Epstein–Barr virus replication protein EBNA1. J Virol 1994;68(6):4067–71. DOI: 10.1128/JVI.68.6.4067-4071.1994

28. Morales-Sanchez A., Fuentes-Panana E.M. Epstein–Barr virus-associated gastric cancer and potential mechanisms of oncogenesis. Curr Cancer Drug Targets 2017;17(6):534–54. DOI: 10.2174/1568009616666160926124923

29. Ling P.D., Rawlins D.R., Hayward S.D. The Epstein–Barr virus immortalizing protein EBNA-2 is targeted to DNA by a cellular enhancer-binding protein. Proc Natl Acad Sci USA 1993;90(20):9237–41. DOI: 10.1073/PNAS.90.20.9237

30. Kaiser C., Laux G., Eick D. et al. The proto-oncogene c-myc is a direct target gene of Epstein–Barr virus nuclear antigen 2. J Virol 1999;73(5):4481–4. DOI: 10.1128/JVI.73.5.4481-4484.1999

31. Wensing B., Farrell P.J. Regulation of cell growth and death by Epstein–Barr virus. Microbes Infect 2000;2(1):77–84. DOI: 10.1016/S1286-4579(00)00282-3

32. Sinclair A.J., Palmero I., Peters G. et al. EBNA-2 and EBNA-LP cooperate to cause G0 to G1 transition during immortalization of resting human B lymphocytes by Epstein–Barr virus. EMBO J 1994;13(14):3321–8. DOI: 10.1002/J.1460-2075.1994.TB06634.X

33. Szekely L., Selivanova G., Magnusson K.P. et al. EBNA-5, an Epstein–Barr virus-encoded nuclear antigen, binds to the retinoblastoma and p53 proteins. Proc Natl Acad Sci USA 1993;90(12):5455–9. DOI: 10.1073/PNAS.90.12.5455

34. Styles C.T., Paschos K., White R.E. et al. The cooperative functions of the EBNA3 proteins are central to EBV persistence and latency. Pathogens 2018;7(1):31. DOI: 10.3390/PATHOGENS7010031

35. Parker G.A., Touitou R., Allday M.J. Epstein–Barr virus EBNA3C can disrupt multiple cell cycle checkpoints and induce nuclear division divorced from cytokinesis. Oncogene 2000;19(5):700–9. DOI: 10.1038/sj.onc.1203327

36. Allday M.J., Farrell P.J. Epstein–Barr virus nuclear antigen EBNA3C/6 expression maintains the level of latent membrane protein 1 in G1-arrested cells. J Virol 1994;68(6):3491–8. DOI: 10.1128/JVI.68.6.3491-3498.1994

37. Wang L., Ning S. New look of EBV LMP1 signaling landscape. Cancers (Basel) 2021;13(21):5451. DOI: 10.3390/CANCERS13215451

38. Wang H.Y., Sun L., Li P. et al. Sequence variations of Epstein–Barr virus-encoded small noncoding RNA and latent membrane protein 1 in hematologic tumors in Northern China. Intervirology 2021;64(2):69–80. DOI: 10.1159/000510398

39. Wang L.W., Jiang S., Gewurz B.E. Epstein–Barr virus LMP1-mediated Oncogenicity. J Virol 2017;91(21):e01718–16. DOI: 10.1128/JVI.01718-16

40. Wang A., Zhang W., Jin M. et al. Differential expression of EBV proteins LMP1 and BHFR1 in EBV-associated gastric and nasopharyngeal cancer tissues. Mol Med Rep 2016;13(5):4151–8. DOI: 10.3892/MMR.2016.5087

41. Chen J., Zhang X., Jardetzky T.S. et al. The Epstein–Barr virus (EBV) glycoprotein B cytoplasmic C-terminal tail domain regulates the energy requirement for EBV-induced membrane fusion. J Virol 2014;88(20):11686–95. DOI: 10.1128/JVI.01349-14

42. Zhang B., Kracker S., Yasuda T. et al. Immune surveillance and therapy of lymphomas driven by Epstein–Barr virus protein LMP1 in a mouse model. Cell 2012;148(4):739–51. DOI: 10.1016/J.CELL.2011.12.031

43. Liu M.T., Chen Y.R., Chen S.C. et al. Epstein–Barr virus latent membrane protein 1 induces micronucleus formation, represses DNA repair and enhances sensitivity to DNA-damaging agents in human epithelial cells. Oncogene 2004;23(14):2531–9. DOI: 10.1038/sj.onc.1207375

44. Cen O., Longnecker R. Latent membrane protein 2 (LMP2). Curr Top Microbiol Immunol 2015;391:151–80. DOI: 10.1007/978-3-319-22834-1_5

45. Namba-Fukuyo H., Funata S., Matsusaka K. et al. TET2 functions as a resistance factor against DNA methylation acquisition during Epstein–Barr virus infection. Oncotarget 2016;7(49):81512–26. DOI: 10.18632/ONCOTARGET.13130

46. Stanland L.J., Luftig M.A. The role of EBV-induced hypermethylation in gastric cancer tumorigenesis. Viruses 2020;12(11):1222. DOI: 10.3390/V12111222

47. Kohli R.M., Zhang Y. TET enzymes, TDG and the dynamics of DNA demethylation. Nature 2013;502(7472):472–9. DOI: 10.1038/NATURE12750

48. Portis T., Longnecker R. Epstein–Barr virus (EBV) LMP2A mediates B-lymphocyte survival through constitutive activation of the Ras/PI3K/Akt pathway. Oncogene 2004;23(53):8619–28. DOI: 10.1038/SJ.ONC.1207905

49. Dümpelmann E., Mittendorf H., Benecke B.J. Efficient transcription of the EBER2 gene depends on the structural integrity of the RNA. RNA 2003;9(4):432–42. DOI: 10.1261/RNA.2176603

50. Kim D.N., Chae H.-S., Oh S.T. et al. Expression of viral microRNAs in Epstein–Barr virus-associated gastric carcinoma. J Virol 2007;81(2):1033–6. DOI: 10.1128/JVI.02271-06

51. Esquela-Kerscher A., Slack F.J. Oncomirs – microRNAs with a role in cancer. Nat Rev Cancer 2006;6(4):259–69. DOI: 10.1038/NRC1840

52. Li W., He C., Wu J. et al. Epstein Barr virus encodes miRNAs to assist host immune escape. J Cancer 2020;11(8):2091–100. DOI: 10.7150/JCA.42498

53. Zebardast A., Tehrani S.S., Latifi T. et al. Critical review of Epstein–Barr virus microRNAs relation with EBV-associated gastric cancer. J Cell Physiol 2021;236(9):6136–53. DOI: 10.1002/JCP.30297

54. Tempera I., Klichinsky M., Lieberman P.M. EBV latency types adopt alternative chromatin conformations. PLoS Pathog 2011;7(7):e1002180. DOI: 10.1371/JOURNAL.PPAT.1002180

55. Frappier L. Epstein–Barr virus: current questions and challenges. Tumour Virus Res 2021;12:200218. DOI: 10.1016/J.TVR.2021.200218

56. Yin H., Qu J., Peng Q. et al. Molecular mechanisms of EBV-driven cell cycle progression and oncogenesis. Med Microbiol Immunol 2019;208(5):573–83. DOI: 10.1007/S00430-018-0570-1

57. Luo Y., Liu Y., Wang C. et al. Signaling pathways of EBV-induced oncogenesis. Cancer Cell Int 2021;21(1):1–11. DOI: 10.1186/S12935-021-01793-3/FIGURES/6

58. Moon S.H., Park N.S., Noh M.H. et al. Olaparib-induced apoptosis through EBNA1-ATR-p38 MAPK signaling pathway in Epstein–Barr virus-positive gastric cancer cells. Anticancer Res 2022;42(1):555–63. DOI: 10.21873/ANTICANRES.15513

59. Hoeger B., Serwas N.K., Boztug K. Human NF-κB1 haploinsufficiency and Epstein–Barr virus-induced disease-molecular mechanisms and consequences. Front Immunol 2018;8:325993. DOI: 10.3389/FIMMU.2017.01978/BIBTEX

60. Zhang Y., Liu W., Zhang W. et al. Constitutive activation of the canonical NF-κB signaling pathway in EBV-associated gastric carcinoma. Virology 2019;532:1–10. DOI: 10.1016/J.VIROL.2019.03.019

61. Chen J. Roles of the PI3K/Akt pathway in Epstein–Barr irus-induced cancers and therapeutic implications. World J Virol 2012;1(6):154–61. DOI: 10.5501/wjv.v1.i6.154

62. Li H., Zhu J., He M. et al. Marek’s disease virus activates the PI3K/Akt pathway through interaction of its protein Meq with the P85 subunit of PI3K to promote viral replication. Front Microbiol 2018;9:2547. DOI: 10.3389/FMICB.2018.02547/BIBTEX

63. El-Sharkawy A., Al Zaidan L., Malki A. Epstein–Barr virus-associated malignancies: roles of viral oncoproteins in carcinogenesis. Front Oncol 2018;8:380969. DOI: 10.3389/FONC.2018.00265/BIBTEX

64. Li D.K., Chen X.R., Wang L.N. et al. Epstein–Barr virus induces lymphangiogenesis and lympth node metastasis via upregulation of VEGF-C in nasopharyngeal carcinoma. Mol Cancer Res 2022;20(1):161–75. DOI: 10.1158/1541-7786.MCR-21-0164

65. Ghose S., Roy S., Ghosh V. et al. The plasma EBV DNA load with IL-6 and VEGF levels as predictive and prognostic biomarker in nasopharyngeal carcinoma. Virology J 2024;21(1):1–10. DOI: 10.1186/S12985-024-02473-0/FIGURES/4

66. Yang H.J., Huang T.J., Yang C.F. et al. Comprehensive profiling of Epstein–Barr virus-encoded miRNA species associated with specific latency types in tumor cells. Virol J 2013;10:1–13. DOI: 10.1186/1743-422X-10-314/TABLES/2

67. Ho J.W.Y., Li L., Wong K.Y. et al. Comprehensive profiling of EBV gene expression and promoter methylation reveals latency II viral infection and sporadic abortive lytic activation in peripheral T-cell lymphomas. Viruses 2023;15(2):423. DOI: 10.3390/V15020423

68. Yoshioka M., Kikuta H., Ishiguro N. et al. Latency pattern of Epstein–Barr virus and methylation status in Epstein–Barr virus associated hemophagocytic syndrome. J Med Virol 2003;70(3):410–9. DOI: 10.1002/JMV.10411

69. Bergbauer M., Kalla M., Schmeinck A. et al. CpG-methylation regulates a class of Epstein–Barr virus promoters. PLoS Pathog 2010;6(9):e1001114. DOI: 10.1371/JOURNAL.PPAT.1001114

70. Sinclair A.J. Could changing the DNA methylation landscape promote the destruction of Epstein–Barr virus-associated cancers? Front Cell Infect Microbiol 2021;11:695093. DOI: 10.3389/FCIMB.2021.695093/BIBTEX

71. Taylor G.S., Long H.M., Brooks J.M. et al. The immunology of Epstein–Barr virus-induced disease. Annu Rev Immunol 2015;33: 787–821. DOI: 10.1146/ANNUREV-IMMUNOL-032414-112326

72. Matsusaka K., Funata S., Fukuyo M. et al. Epstein–Barr virus infection induces genome-wide de novo DNA methylation in non-neoplastic gastric epithelial cells. J Pathol 2017;242(4):391–9. DOI: 10.1002/PATH.4909

73. Gao X., Yang H.X., Cheng S. et al. Epigenetic regulation of Epstein–Barr virus: from bench to bedside. Clin Translat Disc 2024;4:e357. DOI: 10.1002/CTD2.357

74. Li L., Ma B.B.Y., Chan A.T.C. et al. Epstein–Barr virus-induced epigenetic pathogenesis of viral-associated lymphoepithelioma-like carcinomas and natural killer/T-cell lymphomas. Pathogens 2018;7(3):63. DOI: 10.3390/PATHOGENS7030063

75. Murata T., Kondo Y., Sugimoto A. et al. Epigenetic histone modification of Epstein–Barr virus BZLF1 promoter during latency and reactivation in Raji cells. J Virol 2012;86(9):4752–61. DOI: 10.1128/JVI.06768-11

76. Torne A.S., Robertson E.S. Epigenetic mechanisms in latent Epstein–Barr virus infection and associated cancers. Cancers 2024;16(5):991. DOI: 10.3390/CANCERS16050991

77. Kim K.D., Lieberman P.M. Viral remodeling of the 4D nucleome. Exp Mol Med 2024;56(4):799–808. DOI: 10.1038/s12276-024-01207-0

78. Schaeffner M., Mrozek-Gorska P., Woellmer A. et al. BZLF1 interacts with the chromatin remodeler INO80 promoting escape from latent infections with Epstein–Barr virus. bioRxiv 2018;317354. DOI: 10.1101/317354

79. Wen Y., Xu H., Han J. et al. How Does Epstein–Barr virus interact with other microbiomes in ebv-driven cancers? Front Cell Infect Microbiol 2022;12:852066. DOI: 10.3389/FCIMB.2022.852066/BIBTEX


Рецензия

Для цитирования:


Молчанов А.Д., Васильева А.С., Смирнова К.В., Немцова М.В. Вирус Эпштейна–Барр и механизмы молекулярного канцерогенеза. Успехи молекулярной онкологии. 2025;12(2):22-34. https://doi.org/10.17650/2313-805X-2025-12-2-22-34

For citation:


Molchanov A.D., Vasilyeva A.S., Smirnova K.V., Nemtsova M.V. Epstein–Barr virus and mechanisms of molecular carcinogenesis. Advances in Molecular Oncology. 2025;12(2):22-34. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/2313-805X-2025-12-2-22-34

Просмотров: 106


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2313-805X (Print)
ISSN 2413-3787 (Online)