Preview

Успехи молекулярной онкологии

Расширенный поиск

Амниокар – пролиферативная среда для мезенхимальных клеток

https://doi.org/10.17650/2313-805X.2014.1.2.74-78

Полный текст:

Аннотация

Задачи. Разработать питательную среду Амниокар, содержащую эмбриональную телячью сыворотку (ЭТС) и коктейль факторов роста, для накопления биомассы фибробластов человека. Исследовать пролиферативную активность данной среды на культурах клеток мезенхимального происхождения HUVEC и мезенхимальных стромальных клетках, а также на культуре клеток амниотической жидкости человека.

Материалы и методы. Определение скорости накопления клеточной массы и морфологии клеток при культивировании клеток разного гистогенеза в среде Амниокар и питательной среде, содержащей 10 % ЭТС.

Результаты. Показано, что среда Амниокар превосходила стандартную среду DMEM с 10 % ЭТС в 2–5 раз при культивировании фибробластов кожи, HUVEC и мезенхимальных стволовых клеток. Среда Амниокар увеличивала количество клеток эндотелия, вступающих в митоз, и поддерживала культуру клеток HUVEC при длительном пассировании in vitro. Клональное культивирование клеток амниотической жидкости человека в среде Амниокар обеспечивало развитие колоний как фибробластоподобного, так и эпителиального типа.

Выводы. Пролиферативная среда Амниокар эффективна для накопления биомассы различных клеток мезенхимального происхождения и может использоваться в диагностических целях в медицинской генетике, онкологии и др

Об авторах

В. В. Честков
ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН, Россия, 115478, Москва, ул. Москворечье, 1; ООО НПП «ПанЭко», Россия, 115522, Москва, а / я 119
Россия


В. Ю. Табаков
ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН, Россия, 115478, Москва, ул. Москворечье, 1; ООО НПП «ПанЭко», Россия, 115522, Москва, а / я 119
Россия


Ю. В. Щепкина
ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН, Россия, 115478, Москва, ул. Москворечье, 1; ООО НПП «ПанЭко», Россия, 115522, Москва, а / я 119
Россия


Список литературы

1. Soto-Gutierrez A., Yagi H., Uygun B. E. et al. Cell delivery: from cell transplantation to organ engineering. Cell Transplant 2010;19(6):655–65.

2. Freshney R. I. Culture of Animal Cells, a Manual of Basic Technique. 5th ed. Hoboken, NJ: John Wiley&Sons, 2005.

3. Boone C. W., Mantel N., Caruso T. D. Jr. et al. Quality control studies on fetal bovine serum used in tissue culture. In vitro 1971;7(3):174–89.

4. Табаков В. Ю., Щепкина Ю. В., Честков В. В. Современные принципы классификации и разработки питательных сред для культивирования клеток человека и животных. Клеточные технологии в биологии и медицине 2013;(1):47–57. [Tabakov V. Yu., Shchepkina Yu. V., Chestkov V. V. Modern principles of classification and development of nutrient media for cultivation of human and animal cells. Kletochnye tekhnologii v biologii i meditsine = Cell Technologies in Biology and Medicine 2013;(1):47–57. (In Russ.)]

5. Wong T., McGrath J. A., Navsaria H. The role of fibroblasts in tissue engineering and regeneration. Br J Dermatol 2007;156(6):1149–55.

6. Chang H. C., Jones O. W., Masui H. Human amniotic fluid cells grown in a hormone-supplemented medium: suitability for prenatal diagnosis. Proc Natl Acad Sci USA 1982;79(15):4795–9.

7. Табаков В. Ю., Щепкина Ю. В., Честков В. В. Способ культивирования клеток амниотической жидкости и фибробластов человека в специализированной среде «Амниокар». Патент RU № 2415929, приоритет 10.06.2009. [Tabakov V. Yu., Shchepkina Yu. V., Chestkov V. V. Method of cultivation of human amniotic fluid cells and human fibroblasts in the Amniocar specialized medium. Patent RU No. 2415929, priority 10.06.2009. (In Russ.)]

8. Schaefermeier P. K., Cabeza N., Besser J. C. et al. Potential cell sources for tissue engineering of heart valves in comparison with human pulmonary valve cells. ASAIO J 2009;55(1):86–92.

9. Takakura N., Watanabe T., Suenobu S. et al. A role for hematopoietic stem cells in promoting angiogenesis. Cell 2000;102(2):199–209.

10. Morgan D. M.L. Isolation and culture of human umbilical vein endothelial cells. In: Human Cell Culture Protocols. Gareth E. Jones (ed.). Totowa, NJ: HumanaPress, 1996. Pр. 104–9.

11. Kuligowski S., Csirke B., Biddle W. et al. AMNIOMAX™-II complete: a secondgeneration AMNIOMAX medium for primary amniocyte culture. FOCUS 1999;21(2):35–7.

12. Полянская Г. Г., Дьяконова М. Ю. Влияние условий культивирования на кариотипическую структуру клеточной сублинии почки кенгуровой крысы. Цитология 1988;30(11):1355–63. [Polyanskaya G. G., Diakonova M. Yu. Effect of culture conditions on karyotypic structure of cell subline of the kangaroo rat kidney. Tsitologiya = Cytology 1988;30(11):1355–63. (In Russ.)]

13. Pochampally R. R., Smith J. R., Ylostalo J., Prockop D. J. Serum deprivation of human marrow stromal cells (hMSCs) selects for a subpopulation of early progenitor cells with enhanced expression of OCT-4 and other embryonic genes. Blood 2004;103(5):1647–52.

14. Tian J., Ishibashi K., Honda S. et al. The expression of native and cultured human retinal pigment epithelial cells grown in different culture conditions. Br J Ophthalmol 2005;89(11):1510–7.


Для цитирования:


Честков В.В., Табаков В.Ю., Щепкина Ю.В. Амниокар – пролиферативная среда для мезенхимальных клеток. Успехи молекулярной онкологии. 2014;1(2):74-78. https://doi.org/10.17650/2313-805X.2014.1.2.74-78

For citation:


Chestkov V.V., Tabakov V.Y., Shchepkina Y.V. Amniocar as a proliferative medium for mesenchymal cells. Advances in molecular oncology. 2014;1(2):74-78. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/2313-805X.2014.1.2.74-78

Просмотров: 366


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2313-805X (Print)
ISSN 2413-3787 (Online)